Перечень оборудования с указанием производителя, содержащий наименование и основные характеристики приборов, а также сведения о метрологическом обеспечении средств измерений

• Тканевый процессор Leica ТР 1020 (Leica, Германия)
• Заливочная станция Leica EG1160 (Leica, Германия)
• Санный микротом Leica SM 2000R (Leica, Германия)
• Микротом-криостат Leica CM1510S (Leica, Германия)
• Автоматизиpованная система для окраски гистологических препаратов Leica ST5010 (Leica, Германия)
• Автоматическая система окраски препаратов Autostainer/S2820 (Dako, США)
• Автоматический прибор для заключения срезов Leica CV5030 (Leica, Германия)
• Анализатор иммуноферментный Personal Lab (Adaltis, Италия)
• Гематологический анализатор Mindray 2800Vet (Mindray, China)
• Градиентный ВЭЖХ хроматограф Knauer V7603( Knauer, Германия)
• Лиофильная сушка FreeZone Plus (Labconco, США)
• Люминометр Luminoskan TL Plus (ThermoLabsystems, Финляндия)
• Микроскоп Leica DM 2500 (Leica, Германия)
• Микроскоп инвертированный Olympus IX71S8F (Olympus, Германия)
• Микроскоп Leica М620 ТТS (Leica, Германия)
• Микроскоп эпифлюоресцентный Axiovert 200 (Carl Zeiss, Германия)
• Система оптимизации вестерн-блоттинга BIO-RAD V3 Western Workfiow (BIO-RAD, США)
• Спектрофотометр Beckman Coulter DU-800 (Beckman Coulter, США)
• Установка проточной цитофлуориметрии FC500 (BECKMAN COULTER, США)
• Хроматографическая система AKTA BASIC (GE Healthcare Life Science, Швеция)
• Центрифуга настольная с охлаждением Sigma 3K30 (Sigma, Германия)
• Центрифуга Beckman Coulter OPTIMA TLX (Beckman Coulter, США)
• Центрифуга Beckman Coulter AVANTI J-30I (Beckman Coulter, США)
• Система для работы с изолированным сердцем с набором датчиков Power Lab 30 (ADinstruments, США)
• Комплекс оборудования для регистрации трансмембранного потенциала клетки (в составе Потенциометр Warner Instruments Model IE-210 Intracellular Electrometer, USA, Пуллер для изготовления микропипеток Kopf Model 730, David Kopf Instruments, USA)
• Установка для исследования многоклеточных мышечных препаратов Muscle Research System (Scientific Instruments GmbH, Германия)

В числе оборудования ЦКП ИИФ УрО РАН имеются объекты исследовательской инфраструктуры, которые можно использовать для проведения уникальных научных экспериментов:

• Конфокальный лазерный сканирующий микроскоп LSM-710 (Carl Zeiss, Германия; год выпуска – 2009). Является универсальной системой с уникальной оптической схемой и системой детектирования. Позволяет эффективно решать широкий спектр исследовательских задач, предполагающих анализ структуры флуоресцентно меченых клеток, органелл, исследовать сложные механизмы функционирования как отдельных клеток, так и их систем, осуществлять конфокальную микроскопию биологических объектов для реализации исследований в области физиологии, биофизики, молекулярной биологии.
• Оптическая ловушка (год создания – 2011). Двухлучевая управляемая оптическая ловушка создана на базе инвертированного флуоресцентного микроскопа Axio Observer, также включает в себя 5 Вт ИК лазер YAG 1064 с волоконно-оптической развязкой, 2х-координатный акусто-оптический дефлектор (Neos Technology), 3-координатный пьезоманипулятор (Physik Instrumente), видеокамеры Andor iXon Ultra 888 BV USB3 и Photometrics CoolSnap с программой управления и регистрации, установка собрана на противовибрационном столе (Thorlabs). Двухлучевая управляемая оптическая ловушка предназначена для исследования механических свойств мышечных белков и характеристик их взаимодействия на уровне одиночных молекул. Может также использоваться для изучения свойств и характеристик других взаимодействующих белков, например, кинезина с микротрубочками. Возможно применение оптической ловушки для манипулирования одиночными живыми клетками в поле зрения микроскопа.
• Механографическая установка (год создания – 2009). Механографическая установка для экспериментов на одиночных демембранизированных мышечных волокнах с лазерной регистрацией длины саркомеров и комплектом приборов для методики высокоамплитудного скачка температуры в волокне. Аналогичная установка использовалась (и потенциально может быть использована) для исследования рентгено-структурных изменений, вызванных генерацией силы в изолированных мышечных волокнах, а также механизма регуляции этого процесса.
• In vitro подвижная система (год создания – 2011). Система включает в себя инвертированный флуоресцентный микроскоп Axiovert 200M (Carl Zeiss) с возможностью работы в режиме полного внутреннего отражения, трёхволновой лазер, противовибрационный стол (Thorlabs), EMCCD видеокамеру Andor iXon3 897, программное обеспечение для регистрации видеоизображения на диске компьютера и его анализа. Оборудование предназначено для реализации методики in vitro подвижной системы – исследования взаимодействия изолированных мышечных белков, актина и миозина. Производится регистрация скользящего движения меченых флуорофорами актиновых нитей на миозиновых моторных белках, скорость скольжения анализируется с помощью методов анализа изображений. Может применяться в фундаментальных исследованиях мышечного сокращения, а также при скрининге веществ, перспективных в лечении нейромышечных заболеваний. Установка и методика позволяют исследовать широкий круг задач, как фундаментальных, так и прикладных, связанных с нарушениями молекулярной структуры сократительного аппарата скелетных сердечной мышц, в частности, мутаций сократительных и регуляторных белков, являющихся причиной многих, в том числе тяжёлых, врождённых патологий мышц.
• Установка для исследования структурно-функциональных свойств изолированных кардиомиоцитов с применением методики карбоновых волокон (в варианте двух карбоновых волокон; год создания – 2012). Включает устройства микроманипулирования Sutter Instruments (США) – два микроманипулятора (на каждом монтируется держатель с карбоновым волокном), пульт управления и блок управления. Эти устройства смонтированы на базе инвертированного моторизованного микроскопа Axiobserver Z1 (Carl Zeiss, Германия), входящего в состав системы лазерной сканирующей конфокальной микроскопии LSM 710 (Carl Zeiss, Германия). Это позволяет регистрировать непосредственно сократительную функцию изолированного кардиомиоцита при контролируемом задании степени его растяжения (с помощью карбоновых волокон и оптической регистрации миоцита) одновременно с регистрацией широкого спектра протекающих в миоците внутриклеточных процессов (кинетика внутриклеточного кальция, мембранный электрический потенциал, уровень pH и т.д.) и измерять структурные особенности миоцита (поверхность мембраны, внутриклеточные структуры) с применением методики флюоресцентного окрашивания и метода лазерной конфокальной микроскопии.
• Установка для исследования механической функции кардиомиоцитов с применением методики карбоновых волокон (в варианте четырех карбоновых волокон) с механической фиксацией миоцита по типу пинцета (год создания – 2018). Установка построена на основе системы цифрового микроманипулирования Sensapex New Triple Axis (Финляндия), аналоговых одноосных пьезодвигателях Piezosystem Jena (Германия), системы оптического регистрирования IonOptix (США). Позволяет исследовать пассивные вязко-упругие свойства кардиомиоцитов, активные свойства – длинозависимую и грузозависимую регуляцию механической функции кардиомиоцитов, а также влияние фармакологических средств на выше перечисленные свойства.